FAUST-TECHNIK: FUNDAMENT UND MATERIALIEN, SCHRITTE, VOR- UND NACHTEILE - MEDIZIN - 2025

Die Faust-Technik ist eine Methode, die die Konzentration einiger Eier und / oder Larven von Parasiten, die im Kot enthalten sind, durch Schwimmen ermöglicht. Es wird verwendet, wenn direkte koproparasitologische Tests negativ sind oder wenn Sie saubere Proben ohne Detritus erhalten möchten.

Es gibt drei Arten von Konzentrationsmethoden für koproparasitologische Untersuchungen: durch Flotation, durch Sedimentation oder durch Methoden, die die beiden vorhergehenden kombinieren. Diese Methoden erhöhen die Chancen auf positive Ergebnisse.

Stuhlanalyse.

Die Faust-Methode besteht darin, einen Teil der Stuhlprobe mit einer Substanz zu mischen, die dichter ist als die zu konzentrierenden Eier oder Parasiten. Dies führt dazu, dass sie, da sie weniger dicht sind, auf der Oberfläche schweben. Die überstehende Flüssigkeit wird gesammelt und zur Identifizierung und Quantifizierung unter einem Mikroskop betrachtet.

Diese Methode wird verwendet, um Helmintheneier zu visualisieren. Gleichzeitig hat es sich als sehr empfindliche Methode zur Diagnose von Giardia lamblia erwiesen, einem weltweit verbreiteten Flagellenprotozoon. Flotationsmethoden werden für sehr schwere Parasiteneier wie Bandwürmer und Trematoden nicht empfohlen.

Parasiten sind eine der weltweit am weitesten verbreiteten Darminfektionen, insbesondere in armen Ländern mit schlechten Hygienemaßnahmen. Aus diesem Grund sind empfindliche Methoden zur Identifizierung und Quantifizierung dieser Parasiten für die Diagnose und Behandlung sehr nützlich.

Fundament und Materialien

Die Technik basiert auf der Existenz der unterschiedlichen spezifischen Gewichte von Eiern, Parasiten, Zysten, Larven und Detritus unter Verwendung von Zinksulfatlösungen als Flotationsmethode.

Der Grund für die Technik besteht darin, die Probe mit einer Zinksulfatlösung zu mischen, die eine höhere Dichte als leichtere Eier, Larven oder Parasiten aufweist.

Dadurch können die schwereren Elemente ausfallen und die leichteren schwimmen, die nach dem Zentrifugieren der Proben im Überstand erscheinen.

Materialien

Behälter zur Sammlung von Stuhlproben (Quelle: Bobjgalindo über Wikimedia Commons)

- Bereiten Sie eine Zinksulfatlösung mit einer Dichte von 1,18 oder 1,2 g / ml vor, wenn die Probe zuvor behandelt wurde.

- Bereiten Sie ein Rack mit zuvor beschrifteten Reagenzgläsern vor.

- Haben Sie eine Zentrifugalmaschine.

- Halten Sie Objektträger und Deckgläser bereit. Alle müssen beschriftet sein

- Stellen Sie sicher, dass eine Lugol-Lösung verfügbar ist, um die Blätter zu färben.

- Gaze zum Filtern haben.

- Trichter und destilliertes Wasser haben.

- Suchen Sie beschriftete Kunststoff- oder Kartonbehälter.

- Auch Applikatoren und steriler Griff von 5 mm.

- Ein Feuerzeug zum Sterilisieren des Griffs.

Schritte

Makroskopische und mikroskopische Untersuchung

Bei jeder Stuhluntersuchung beginnt die Untersuchung mit der sogenannten "Bruttountersuchung" der Proben.

Die Konsistenz, Farbe, das Vorhandensein von scheinbar Blut, das Vorhandensein von Schleim und das Vorhandensein von erwachsenen Parasiten werden beschrieben.

Dann fahren wir mit der "mikroskopischen Untersuchung" des Stuhls fort, dies hängt von der Methode ab. Die einfachste ist die direkte Abstrichmethode, die einfachste mikroskopische Beobachtungsmethode für Parasiten.

Foto der Beobachtung von Gardia lamblia, einem Darmparasiten (Quelle: Riddlemaster via Wikimedia Commons)

Bei diesem Verfahren wird eine kleine Menge der Probe direkt auf einen Objektträger gelegt. Geben Sie mehrere Tropfen Kochsalzlösung, die der Probe ähnlich groß sein sollten. Mischen Sie die Salzlösung mit dem Stuhl, bis eine homogene Mischung entsteht. Legen Sie ein Deckglas und untersuchen Sie es unter dem Mikroskop.

Ursprüngliche Faust-Technik

Das zweite Verfahren besteht aus der Faust-Float-Methode, deren ursprüngliche Version besteht aus:

1- Legen Sie etwa zwei Gramm Kot in einen geeigneten Behälter für diesen Zweck.

2- 30 ml Zinksulfat-Flotationslösung zugeben, mit der eine Emulsion hergestellt wird, indem die Lösung mit dem Kot gemischt wird.

3- Mit einem Metallsieb in einen zweiten Behälter abseihen und in ein Reagenzglas überführen.

4- Fügen Sie mehr Flotationslösung hinzu, bis sich ein Meniskus im Röhrchen bildet.

5- Legen Sie ein Glasdeckglas auf den Meniskus. 10 bis 15 Minuten ruhen lassen.

6- Entfernen Sie das Deckglas und legen Sie es auf einen Objektträger, der unter einem Mikroskop untersucht wird.

Faust-Technik durch Zentrifugation

Ursprünglich wurde bei der Methode keine Zentrifugation verwendet, jetzt ist sie jedoch enthalten, da bessere Ergebnisse erzielt werden. Die Technik umfasst eine Reihe von Schritten, um ein korrektes Verfahren zu erreichen. Diese sind wie folgt:

1- Der Kot wird mit Wasser gewaschen, gut gemischt und dann mit in vier Teile gefalteter Gaze filtriert. Die Probe wird in ein Reagenzglas gegeben.

2- Zentrifugieren und entfernen Sie den Überstand (Proben, die über Wasser aufbewahrt werden). Die Schritte 1 und 2 werden wiederholt, bis der Überstand "klar" ist.

3- Der filtrierten und zentrifugierten Probe wird Zinksulfat zugesetzt.

4- Es mischt sich gut.

5- Erneut 1 Minute bei 2500 U / min (Umdrehungen pro Minute) zentrifugieren.

6- Der Überstand wird mit einer sterilen Schleife von etwa 5 mm gewonnen; Die Röhrchen sollten nicht geschüttelt werden.

7- Die aus dem Überstand gewonnene Probe wird auf einen Objektträger gegeben und ein Tropfen Lugol kann zum Färben gegeben werden, das Deckglas wird platziert und unter einem Mikroskop beobachtet.

8- Die Behälter und Reagenzgläser sind gekennzeichnet.

Vorteil

- Die für die Diagnose verwendeten Elemente sind sauber und ohne „Detritus“ zu sehen. Dies erleichtert die Beobachtung des Blattes und verkürzt die für die Diagnose verwendete Zeit.

- Im Überstand werden sowohl Larven als auch Eier und / oder Zysten gewonnen.

- Es ist eine sehr kostengünstige Methode.

- Das Verfahren ist sehr einfach und leicht zu implementieren.

- Die Diagnose ist schnell und genau.

- Aufgrund der Bedeutung und der hohen Inzidenz von Parasitose in armen Ländern sind diese kostengünstigen und benutzerfreundlichen Methoden ideal für die Diagnose und Überwachung dieser Pathologien.

Nachteile

Die Dichte der Flotationslösung führt zu einer Kontraktion der Larven, dh sie schrumpfen und können sich in sehr kurzer Zeit verformen. Dies zwingt den Prüfer, die Diagnose sofort zu stellen, und die behandelten Proben können nicht für zukünftige Untersuchungen aufbewahrt werden.

Wie bei allen mikroskopischen Identifikationsmethoden ist ein sehr erfahrenes Untersuchungspersonal erforderlich, um genaue Diagnosen zu stellen.

Die schnelle Verformung der für die Diagnose erforderlichen Elemente ist zwar ein offensichtlicher Nachteil, kann jedoch durch sofortige mikroskopische Beobachtungen korrigiert werden.

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