Die Stuhluntersuchung ist eine Laborstudie, bei der Stuhl (Kot) untersucht wird, um Darmparasiten zu erkennen. Es ist eine der einfachsten und ältesten Labortechniken, die ursprünglich von Anton Van Leeuwenhoek im 18. Jahrhundert entwickelt wurde.
Anton Van Leeuwenhoek, der als Vater der Mikrobiologie gilt, verwendete die "direkte" koproparasitoskopische Methode, um seinen eigenen Kot zu beobachten, und beschrieb, was Jahre später als Trophozoiten von Giardia lamblia identifiziert wurde, einem Protozoon, das in den Dünndarm des Menschen eindringt.
Ascaris lumbricoides Erwachsenenform (Quelle: Wikimedia Commons)
Parasitäre Krankheiten betreffen Millionen von Menschen auf der Welt, insbesondere in armen oder unterentwickelten Ländern, in denen schlechte hygienische Bedingungen im Zusammenhang mit der Entsorgung von Ausscheidungen und dem Verbrauch von kontaminiertem Wasser bestehen.
Die Diagnose dieser Krankheiten ist wichtig für eine adäquate Behandlung, da die koproparasitoskopische Untersuchung ein unverzichtbares Instrument dafür ist. Es ist ein einfacher, schneller und kostengünstiger Labortest.
Die Stuhluntersuchung umfasst verschiedene Techniken, die neben der direkten Visualisierung und Quantifizierung von Eiern, Trophozoiten, Zysten oder Larven auch die Identifizierung der Strukturen des Mikroorganismus und damit die Identifizierung des Parasiten ermöglichen.
Techniken, die für die koproparasitoskopische Untersuchung verwendet werden, umfassen Methylenblau-Färbetechniken, Konzentrationsmethoden, die Faust-, Richie-Technik, Sedimentationstechniken und direkte, einzelne oder serielle Untersuchungen.
Unbefruchtetes Ei von Ascaris lumbricoides. (Quelle: Zentren für die Kontrolle und Prävention von Krankheiten, über Wikimedia Commons).
Probenahme
Um diese Studie durchzuführen, muss der Patient eine frische Stuhlprobe entnehmen, die nicht mit Urin, Wasser, Blut (Menstruation) oder Erde kontaminiert ist. Die Probe muss die Größe einer Walnuss haben oder, wenn sie flüssig ist, mindestens das Volumen haben, das zwei Esslöffeln entspricht.
Der Patient darf mindestens drei Tage vor der Probenentnahme oder für den von seinem Arzt angegebenen Zeitraum keine parasitiziden Medikamente eingenommen haben. Sie sollten auch keine Abführmittel verwenden.
Die Proben sollten in einen trockenen Behälter mit weitem Mund und Deckel oder in einen speziell entwickelten Einwegbehälter (erhältlich in Ihrer bevorzugten Apotheke) gegeben werden. Die Proben sollten in einer kühlen Umgebung aufbewahrt, nicht länger als 24 Stunden gekühlt und nicht in der Nähe von Wärmequellen gelagert oder gefroren werden.
Wenn die angegebene Untersuchung seriell ist, sind mindestens drei Proben erforderlich, die alle 24 Stunden oder länger entnommen werden müssen, wie vom Arzt angegeben. Für diese Fälle stellen Laboratorien im Allgemeinen einen Satz Kolben bereit, die Lösungen mit Konservierungsmitteln enthalten.
Wenn der Patient nach Möglichkeit einen "Wurm" im Stuhl beobachtet, sollte er ihn in eine geschlossene Flasche mit Wasser legen und zusammen mit der Flasche der Stuhlprobe ins Labor bringen.
Die Fläschchen mit den Proben oder mit den "Würmern" müssen gekennzeichnet und mit dem Namen des Patienten, seinem Alter, Geschlecht sowie Datum und Uhrzeit der Probenentnahme gekennzeichnet sein.
Es ist sehr wichtig, den Patienten in all diesen Aspekten der Probenahme und -handhabung angemessen zu unterweisen, da dies davon abhängt, ob die in dieser Probe vorhandenen Elemente für die Beobachtung, Identifizierung und Diagnose lebensfähig bleiben.
Techniken
Es gibt direkte koproparasitoskopische Untersuchungen sowie Suspensions- und Konzentrationstechniken der Proben, die häufig verwendet werden, um falsch negative Ergebnisse zu vermeiden und viel sauberere Proben zu beobachten. Einige Färbetechniken werden auch verwendet, um bestimmte Parasiten zu identifizieren.
Direkte Prüfungen
Die direkte Stuhluntersuchung unter Verwendung der Technik des anstehenden Tropfens besteht darin, die Stuhlprobe mit physiologischer Lösung (0,9% NaCl) zu verdünnen und einen Tropfen dieser Lösung in eine Konkavität mit einem speziell verwendeten Objektträger zu geben. zu diesem Zweck.
Sobald der Tropfen auf dem Objektträger platziert ist, wird er mit einem Deckglas abgedeckt und unter dem Mikroskop beobachtet. Diese Technik ermöglicht es uns, Eier und Zysten zu beobachten, aber sie ermöglicht es uns auch, jedes mobile Element wie Flagellaten, Larven, Trophozoiten, Ciliaten usw. zu beobachten.
Suspensions- und Konzentrationstechniken
Suspensionstechniken verwenden eine Lösung, die dichter als die zu beobachtenden Elemente ist, so dass diese auf der Oberfläche der Flüssigkeit schwimmen und gesammelt werden können, da sie in der Oberflächenschicht der Lösung konzentriert bleiben.
Diese Technik hat den Vorteil, dass eine ziemlich saubere Schmutzprobe erhalten werden kann, da diese, da sie dichter sind, am Boden der Flasche verbleiben. Der relative Nachteil besteht darin, dass die Lösung in kurzer Zeit schrumpft und die Mikroorganismen verformt.
Diese Methoden werden nicht für Helminthen- und Cestodeneier verwendet, da sie sehr schwer sind und in diesen Lösungen nicht schwimmen. Sie werden häufig zur Beobachtung von Protozoen in ihrer tropozoischen Form oder ihrer Eier und zur Beobachtung von Larven wie denen von Strongyloides stercoralis verwendet.
Eine andere Technik, die weit verbreitet ist, weil sie die Mikroorganismen in der Probe nicht verformt und einfach und kostengünstig ist, ist die Formalinsedimentationstechnik.
Beispiele für Konzentrationstechniken sind Fausts und Richies Techniken.
Die verschiedenen Techniken, die die mikroskopische Visualisierung der Eier, Larven oder anderer Elemente der verschiedenen Darmparasiten ermöglichen, ermöglichen in Kombination mit den Färbetechniken die Identifizierung und Diagnose dieser Krankheiten.
Beispiele
Als nächstes wird ein klinischer Fall beschrieben und einige Bilder werden gezeigt, die die Nützlichkeit der Stuhluntersuchung für die Diagnose und Bewertung der Vorteile der Behandlung veranschaulichen.
Trichuris trichuria Ei (Quelle: CDC / Dr. Mae Melvin, mit freundlicher Genehmigung der Public Health Image Library über Wikimedia Commons)
Ein 18-jähriger männlicher Patient kam wegen kolikartiger Bauchschmerzen, die im periumbilikalen Bereich, Übelkeit und Episoden von wässrigem Durchfall stärker waren, in die Arztpraxis.
Bei der Befragung des Patienten stellte der Arzt zwei wichtige Punkte fest: 1) Der Patient gab an, in einem See in einer ländlichen Gegend gebadet zu haben, und 2) er war beeindruckt von der Tatsache, dass sein Stuhl in der Toilette schwebte. Nach der Untersuchung des Patienten vermutet der Arzt das Vorhandensein von Giardia lamblia.
Lebenszyklus von Giardia lamblia (Quelle: LadyofHats über Wikimedia Commons)
Dieses Protozoon befindet sich im Dünndarm des Menschen und beeinträchtigt die Aufnahme von Fetten, wodurch sehr fettige Stühle entstehen, die zum Schweben neigen. Verschmutzung tritt häufig durch verschmutztes Wasser in Seen oder Bächen in ländlichen Gebieten oder durch schlecht gewartete Pools oder Whirlpools auf.
Giardia lamblia trophozoites (Quelle: Foto von Eva Nohýnková, Abteilung für Tropenmedizin, 1. Medizinische Fakultät, Karlsuniversität in Prag und Krankenhaus Bulovka, Tschechische Republik. Bild in Papierform von Marie Lipoldova, Labor für Molekulare und Zelluläre Immunologie, Institut für Molekulare Genetik, Akademie der Wissenschaften der Tschechischen Republik, Prag, Tschechische Republik via Wikimedia Commons)
Der Arzt ordnet eine Stuhluntersuchung an und die Ergebnisse bestätigen das Vorhandensein von Giardia lamblia. Nach dem Ende der Behandlung wird eine weitere Stuhluntersuchung angezeigt, die das Fehlen von Zysten oder Trophozoiten von Giardia lamblia bestätigt.
Verweise
- D. Buonfrate, MA Mena, A. Angheben, A. Requena-Mendez, J. Muñoz, F. Gobbi,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Prävalenz der Strongyloidiasis in Lateinamerika: eine systematische Überprüfung der Literatur. Epidemiology & Infection, 143 (3), 452 & ndash; 460.
- von Haro Arteaga, I. & Ruiz, AEC (2014). Diagnose von. Medizinische Parasitologie (4a, 347.
- D. Mendoza, FA Nunez, AA Escobedo, L. Pelayo, M. Fernandez, D. Torres & RA Cordovi (2003). Nützlichkeit von 2 koproparasitologischen Methoden und deren Verwendung in einer therapeutischen Studie gegen Antigiardiasis. Cuban Journal of Tropical Medicine, 55 (3), 174-178.
- Preis, -DL (2017). Verfahrenshandbuch zur Diagnose von Darmparasiten. CRC Drücken Sie.
- Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M. & Orhan, R. (1984). Eine koproparasitologische Studie über die Wrestler der Nationalmannschaft. Mikrobiyoloji bülteni, 18 (2), 114 & ndash; 118.